Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева.

ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ НАУКИ

ИНСТИТУТ
ФИЗИОЛОГИИ РАСТЕНИЙ

ИМ. К.А. ТИМИРЯЗЕВА
РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК

Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева.
ГЛАВНАЯ
ОСНОВНЫЕ НАУЧНЫЕ
НАПРАВЛЕНИЯ
СТРУКТУРА ИНСТИТУТА
ИСТОРИЯ ИНСТИТУТА
АСПИРАНТУРА,
ДОКТОРАНТУРА
НОВОСТИ, ОБЪЯВЛЕНИЯ
КОЛЛЕКЦИИ
БИБЛИОТЕКА И ДОСТУП
К ОН-ЛАЙН РЕСУРСАМ
КАК НАС НАЙТИ
ПОИСК ПО САЙТУ
ПОЛЕЗНЫЕ ССЫЛКИ
СОВЕТ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ ИФР РАН
ENGLISH
Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева.

АДМИНИСТРАЦИЯ ИНСТИТУТА

УЧЕНЫЙ СОВЕТ ИНСТИТУТА

ПРОФСОЮЗНЫЙ КОМИТЕТ ИНСТИТУТА

НАУЧНЫЕ ПОДРАЗДЕЛЕНИЯ ИНСТИТУТА


Лаборатория генетики культивируемых клеток

Английская версия

Заведующий лабораторией – Долгих Юлия Ивановна, д.б.н., профессор
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Ю.И. Долгих
        Юлия Ивановна Долгих

Основные направления исследования
  1. изучение характера, темпа и особенностей генетической изменчивости клеток in vitro в нормальных и стрессовых условиях;
  2. исследование генетической и физиологической регуляции морфогенеза в культурах тканей растений;
  3. получение устойчивых к абиотическим стрессам (засолению, засухе, действию тяжелых металлов, затоплению) клеточных линий и растений с помощью методов клеточной и генетической инженерии;
  4. создание клеточных штаммов – продуцентов БАВ методами клеточной селекции и генетической инженерии, исследование гормональной регуляции биосинтеза специфических алкалоидов.

Основные результаты деятельности

Характеристика генетической изменчивости клеток
при культивировании in vitro

В результате применения различных методических подходов для анализа одних и тех же растений-регенерантов впервые дана комплексная оценка и выявлены закономерности сомаклональной изменчивости кукурузы. Выявлены признаки, наиболее подверженные изменчивости in vitro. Показано, что культивирование тканей в стрессовых условиях повышает частоту сомаклональной изменчивости, при этом в значительной степени возрастает доля летальных и полулетальных изменений.
Впервые у сомаклонов кукурузы проанализирована изменчивость RAPD- и ISSR-маркеров, и обнаружен высокий уровень полиморфизма ДНК. Клонирование и секвенирование полиморфных фрагментов выявило многочисленные мутации в виде замены нуклеотидов и делеций. Для некоторых полиморфных фрагментов показана гомология с ретротранспозонами кукурузы. Это подтверждает гипотезу о том, что одним из механизмов сомаклональной изменчивости является активация мобильных элементов генома.
Определен уровень генетической изменчивости в культурах клеток Zea mays и Arabidopsis thaliana, выращиваемых в стрессовых условиях. В каллусе Arabidopsis thaliana, характеризовавшемся низким уровнем полиморфизма ДНК-маркеров в нормальных условиях, отмечено увеличение генетической вариабельности после стрессовых воздействий. В клеточных линиях кукурузы, для которых был характерен высокий уровень генетической гетерогенности, происходило уменьшение степени изменчивости, обусловленное, вероятно, отбором более приспособленных генотипов.
Определено влияние культивирования клеток на стабильность наследования и экспрессии трансгенов. На примере гена nptII показано, что частота выпадения или модификации введенного гена соответствует уровню сомаклональной изменчивости (менее 10%), но частота «замолкания» трансгена in vitro выше, чем при размножении растений in vivo.
Исследовано влияние условий криосохранения на генетическую стабильность депонированного материала. Показано, что дегидратация каллусных клеток пшеницы при подготовке к замораживанию, и, возможно, само замораживание вызывают снижение морфогенетического потенциала и провоцирует активацию ретротранспозонов.

Получение растений, толерантных к абиотическим стрессовым факторам
На основании изучения характера сомаклональной изменчивости, а также реакции культивируемых клеток и растений на абиотические стрессовые факторы разработаны методы клеточной селекции толерантных к гипоксии, засухе, засолению и экстремальным температурам форм растений.
Предложенная схема клеточной селекции, сочетающая непродолжительный, но жесткий отбор in vitro с сохранением регенерационного потенциала, является универсальной и может быть рекомендована для всех видов растений.
Получены образцы пшеницы (Triticum aestivum L.), которые в два раза превосходили исходный сорт по выживанию в условиях корневого затопления. Признак устойчивости сохранялся в следующих поколениях, что указывает на его генетическую природу.
Получены осмоустойчивые клеточные линии и растения кукурузы (Zea mays L.), толерантные к засухе, засолению и низким температурам.
Исследовано действие противогололедных реагентов и солей тяжелых металлов на растения газонных трав полевицы (Agrostis stolonifera L.) и овсяницы (Festuca rubra L.). Путем клеточной селекции получены толерантные к NaCl, ионам меди и кадмия растения, которые способны расти на загрязненных городских почвах без ухудшения газонных качеств.

Регуляция морфогенеза в культуре тканей кукурузы
Сформулирована двухэтапность процесса морфогенеза в культуре тканей in vitro, и охарактеризован тип регуляции каждого этапа. На стадии индукции эмбриогенного каллуса кукурузы преобладает влияние генотипа, а на стадии регенерации растений из соматических эмбриоидов большее значение имеют условия культивирования и состав питательной среды. Показано повышение частоты регенерации растений под действием эмистима, цефотаксима и слабого постоянного электрического тока. Показана зависимость морфогенетического потенциала от соотношения гормонов в клетках эксплантов кукурузы.
Исследовали роль гена NtDCN1 в индукции органогенеза в культуре соматических тканей табака (Nicotiana tabacum L.). Инактивация гена NtDCN1 вызывала усиление побегообразования и ослабление ризогенеза, а восстановление его работы сопровождалось возвращением к уровню органогенеза тканей табака дикого типа. Полученные данные позволяют предположить участие исследуемого гена в реакции на ауксин. На основании гомологии выделенной последовательности с консервативным геном DCN-1, участвующим в модификации куллина в системе опосредованной убиквитином специфической деградации белков, высказано предположение, что ген NtDCN1 важен для передачи ауксинового сигнала.

Получение клонов лекарственных растений с повышенной продуктивностью и оптимизация условий их культивирования
Предложена новая селективная система, направленная на получение клеток с измененной регуляцией биосинтеза изопреноидов. С помощью индуцированного мутагенеза и клеточной селекции отобраны клоны диоскореи (Dioscorea deltoidea Wall.) с повышенным содержанием диосгенина.
Получены клеточные линии стефании гладкой (Stephania glabra (Roxb) Miers), характеризующиеся высоким содержанием стефарина. Выделено несколько клеточных линий василистника (Thalictrum minus L.) с повышенным в 2-4 раза уровнем протобербериновых алкалоидов – ценных лекарственных соединений. На основании сравнительного анализа исходного штамма и мутантных клеточных линий была показана положительная корреляция между уровнем эндогенного ауксина и содержанием протобербериновых алкалоидов. Высокопродуктивные клетки характеризовались также пониженной потребностью в экзогенном ауксине; они могли активно расти при снижении исходного уровня 2,4-Д в среде в 100 раз. При этом содержание протобербериновых алкалоидов увеличивалось на 60% по сравнению с культивированием в стандартных условиях, и возрастала доля наиболее ценного алкалоида - берберина. Полученные результаты дают основание предположить участие ауксина в регуляции биосинтеза протобербериновых алкалоидов.
Исследуется влияние на активность биосинтеза протобербериновых алкалоидов эндогенного цитокинина. Разработана оригинальная технология генетической трансформации культивируемых клеток василистника. Для повышения содержания эндогенного цитокинина клетки василистника были трансформированы геном изопентениладенин трансферазы, кодирующим ключевой фермент биосинтеза цитокининов. Три из восьми проверенных линий имели повышенную на 40-140% продукцию протобербериновых алкалоидов. Таким образом, впервые получены и охарактеризованы трансгенные линии василистника, несущие ген изопентениладенин трансферазы, которые могут быть использованы как источник сырья для получения биологически активных соединений и как модель для изучения роли цитокининов в регуляции вторичного метаболизма.

Разработка методов агробактериальной трансформации злаковых и получение трансгенных растений пшеницы
Разработаны эффективные методы опосредованной Agrobacterium tumefaciens генетической трансформации эмбриогенного каллуса, зародышей или семян злаковых растений. Разработанный метод апробирован на кукурузе (Zea mays), мягкой пшенице (Triticum aestivum), овсянице красной (Festuca rubra) и ячмене (Hordeum vulgare) с использованием нескольких штаммов Agrobacterium tumefaciens и различных генетических конструкций. Частота трансформации варьировала от 1 до 10%.
Растения пшеницы, трансформированные геном изопентениладенин трансферазы (ipt) и содержащие повышенное количество цитокининов, продемонстрировали более высокую устойчивость к гипоксии, вызванной корневым затоплением. Каллусные ткани, полученные от трансгенных растений, имели увеличенную способность к соматическому эмбриогенезу.
Растения пшеницы, трансформированные геном пролиндегидрогеназы (pdh) арабидопсиса в антисмысловой ориентации, характеризовались более высокой устойчивостью к NaCl и ионам кадмия и многократным повышением содержания пролина в стрессовых условиях.

Изучение механизмов повреждения и адаптации растений в условиях анаэробного стресса. Руководитель направления профессор Б.Б. Вартапетян

     Б.Б. Вартапетян
Профессор Борис Багратович Вартапетян

История развития данного направления в составе группы анаэробиоза (1972-2014).
Важнейшие результаты проведенных исследований:
  1. Используя тяжелый изотоп кислорода 18О, в опытах с интактными растениями впервые удалось показать, что поглощаемый в процессе дыхания кислород используется в качестве акцептора электронов, тогда как кислород, входящий в состав углекислого газа, образующегося в результате дыхания, имеет водное происхождение.
  2. Используя метод нано-технологии, а именно ультрамикрометод анализа 18О в ядерной реакции 18O8(α,nγ)21Ne10 в циклотроне, показан оксигеназный механизм биосинтеза одного из важнейших физиологически активных соединений – витамин А из бета-каротина. Это открытие вошло в биохимические справочники, учебники и руководства.
  3. Применение 18O8( позволило впервые продемонстрировать на животных (тутовый шелкопряд и вредная черепашка) и на растениях роль биосинтетической воды в водном балансе этих организмов. В частности, исследования с суккулентами (кактусы) позволили сформулировать представление о биосинтезе эндогенной воды в замкнутом теле этих организмов (в экстремальных условиях водного дефицита) благодаря рециклизации процессов дыхания и фотосинтеза.
  4. Впервые было открыто и затем доложено на XII Международном ботаническом конгрессе новообразование у растений (в условиях анаэробного стресса) стрессовых белков. Важное функциональное значение анаэробных стрессовых белков в адаптации растений к аноксии было показано в дальнейших исследованиях, в которых синтез этих белков был ингибирован на уровне трансляции.
  5. Исследование структуры и функции митохондрий растений в условиях анаэробного стресса позволило сделать заключение о возможности самосборки и длительной стабилизации тонкой структуры мембран митохондрий благодаря использованию АТФ экстрамитохондриального (гликолитического или фотосинтетического) происхождения, а не только за счет транспорта электронов в мембранах самих митохондриях и генерации в них АТФ, как это считалось ранее.
  6. В опытах с анаэробно прорастающими семенами риса было показано, что феноменальная их способность прорастать в отсутствии молекулярного кислорода, сохраняя при этом ультраструктуру клетки в интактном состоянии, следует объяснить не резистентностью клеточных мембран к аноксии, а необычной способностью этих растений (в отличие от нетолерантных растений) в условиях строгой аноксии (а) мобилизовывать и транспортировывать запасные вещества семени в растущий проросток и (б) легко повышать при этом скорость гликолитической генерации АТФ.
  7. Используя методы функциональной электронной микроскопии удалось впервые визуализировать и продемонстрировать на уровне ультраструктуры растительной клетки явление генерального адаптационного синдрома и обосновать молекулярные механизмы реализации этого феномена при анаэробном стрессе.
  8. Открыто парадоксальное явление, а именно гиперчувствительность к аноксии клеток корней толерантных растений, обитающих на анаэробных почвах. Это открытие, а также демонстрация ключевой роли энергетического и углеводного метаболизма в истинной толерантности клеток растений к анаэробному стрессу, позволило сформулировать общепринятую теперь концепцию о двух главных стратегиях адаптации растений к низко-кислородному стрессу (гипоксия и аноксия) – истинная и кажущаяся толерантности растений.
  9. Таким образом, создано новое научное направление экологической биологии – учение об анаэробном стрессе растений, которое получило международное признание и активно развивается в настоящее время в многочисленных университетах и научных центрах мира.

На протяжении ряда лет группа анаэробиоза сотрудничала с лабораторией генетики культивирумых клеток. На основе концепции о двух стратегиях адаптации растений к аноксии разработаны биотехнологические способы получения толерантных к гипоксии клеточных линий и растений, включающие клеточную и генетическую инженерию. Путем отбора in vitro в анаэробных условиях на среде без углеводородов впервые выделены клеточные линии сахарного тростника, клеточные линии и растения пшеницы, толерантные к корневому затоплению. На примере трансгенных растений табака, экспрессирующих ген апоптотической протеазы фитаспазы, показано увеличение устойчивости к гипоксии при облегчении транспорта кислорода из надземных частей в корни. В 2015 г. группа анаэробиоза вошла в состав лаборатории генетики культивируемых клеток.

Состав лаборатории

Долгих Юлия Ивановна – д.б.н., профессор, зав. лабораторией
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Вартапетян Борис Багратович – Пожизненный Почетный Президент Международного Общества по анаэробиозу растений (ISPA), Засл. деятель науки РФ, д.б.н., профессор, ведущий научный сотрудник.
Тел.: (499) 231-83-85, E-mail: borisvartapet@ippras.ru

Гладков Евгений Александрович – к.б.н., научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Жданов Сергей Викторович – к.б.н., лаборант
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Литвинова Илина Игоревна – научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Миляева Эльвина Леонидовна – к.б.н., старший научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-88, E-mail: e_milyaeva@mail.ru

Осипова Екатерина Сергеевна – к.б.н., старший научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Осипова Елена Александровна – к.б.н., старший научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Соловьева Александра Ивановна – к.б.н., научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Терешонок Дмитрий Викторович – к.б.н., научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru

Цыбулько Наталья Степановна – к.х.н., научный сотрудник
Тел.: (499) 231-83-34, E-mail: gsc@ippras.ru


Книги

Vartapetian B.B. (2015) Plant anaerobic stress as novel avenue of research in ecological biology and biotechnology. Moscow, Vash format, 130 p.


Публикации лаборатории за 2009-2015 годы

Степанова А.Ю., Орлова Е.В., Терешонок Д.В., Долгих Ю.И. (2015) Получение трансгенных растений люцерны посевной (Medicago sativa L.) для повышения эффективности фиторемедиации нефтезагрязненных почв. Экологическая генетика, 13(2), 127-135.

Соловьева А.И., Гайсинский В.В., Долгих Ю.И. (2015) Влияние ионов меди на уровень генетической изменчивости двух каллусных линий кукурузы разного возраста. Физиология растений, 62, 89-95.

Седов К.А., Фоменков А.А., Соловьева А.И., Носов А.В., Долгих Ю.И. (2014) Уровень генетической изменчивости клеток в длительно культивируемой суспензии Arabidopsis thaliana. Известия РАН, Сер. Биологическая, 6, 574-580.

Вартапетян Б.Б., Долгих Ю.И., Полякова Л.И., Чичкова Н.В., Вартапетян А.Б. (2014) Биотехнологические подходы в создании растений, толерантных к гипоксии и аноксии. Acta naturae, том 6, выпуск № 2(21), 21-33.

Гладков Е.А., Долгих Ю.И., Гладкова О.В. (2014) Получение многолетних трав, устойчивых к хлоридному засолению, с помощью клеточной селекции. Сельскохозяйственная биология, 4, 106-111.

Гладков Е.А., Литвинова И.И., Гладкова О.В. (2014) Повышение экологической валентности полевицы побегоносной и хризантемы килеватой к неблагоприятным условиям городских экосистем. Проблемы региональной экологии, 5, 112-116.

Долгих Ю.И., Степанова А.Ю., Трусова С.В., Чичкова Н.В., Вартапетян А.Б. (2013) Локализованный в митохондриях антиоксидант повышает морфогенетический потенциал в культурах тканей растений. Физиология растений, 60, 747-753.

Вартапетян Б.Б., Полякова Л.И., Степанова А.Ю., Долгих Ю.И. (2012) Физиологическая роль нитрата в условиях анаэробного стресса у толерантных и чувствительных к аноксии клеток каллусов. Физиология растений, 59, 739-745.

Орлова Е.В., Степанова А.Ю. (2012) Получение растений-регенерантов люцерны клейкой (Medicago glutinosa L.), устойчивых к нефтезагрязнениям, без применения селективного агента. Сельскохозяйственная биология, 4, 88-93.

Литвинова И.И., Гладков Е.А. (2012) Введение в культуру клеток растений, используемых в качестве кормовых, лекарственных и декоративных, для получения стрессоустойчивых форм. Сельскохозяйственная биология, 4, 94-99.

Титова М.В., Решетняк О.В., Осипова Е.А., Суханова Е.С., Осипьянц А.И., Шумило Н.А., Орешников А.В., Носов А.М. (2012) Глубинное культивирование клеток Stephania glabra (Roxb) Miers: оптимизация гормонального состава питательных сред. Вестник МарГТУ, 1, 30-34.

Долгих Ю. И., Седов К.А. (2012) Влияние факторов стресса на культуру тканей Arabidopsis thaliana в условиях in vitro. Известия МГТУ «МАМИ», 2(14), 310-314.

Литвинова И.И., Гладков Е.А., Седов К.А. (2012) Оценка фитотоксичности меди и получение стресс-устойчивых двудольных растений. Известия МГТУ «МАМИ», 2(14), 314-318.

Гладков Е.А., Литвинова И.И. (2012) Введение в культуру клеток и получение растений брахикомы иберисолистной и хризантемы килеватой. Известия МГТУ «МАМИ», 4, 318-323.

Гладков Е.А., Гладкова О.Н., Глушецкая Л.С. (2012) Повышение устойчивости полевицы побегоносной (Agrostis stolonifera L) к солям кадмия. Известия МГТУ «МАМИ», 4, 323-327.

Osipova E.S., Lysenko E.A., Troitsky A.V., Dolgikh Yu.I., Shamina Z.B., Gostimskii S.A. (2011) Analysis of SCAR marker nucleotide sequences in maize (Zea mays L.) somaclones. Plant Sci., 180, 313–322.

Литвинова И.И., Седов К.А., Гладков Е.А. (2011) Введение в культуру клеток декоративных растений, используемых в мавританском газоне. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России, Высоцкий В.А. и Алексеенко Л.В. (ред.), т. XXVI, М: ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии, с. 196-199.

Никишина Т.В., Высоцкая О.Н., Соловьева А.И., Попов А.С. (2011) Влияние температурных колебаний на жизнеспособность семян и при криогенном хранении. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России, Высоцкий В.А. и Алексеенко Л.В. (ред.), т. XXVI, М: ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии, с. 171-178.

Орлова Е.В., Гладков Е.А., Гладкова О.В., Степанова А.Ю. (2011) Оценка токсичности нефти для полевицы побегоносной (Agrostis stolonifera L.) и биотехнологический способ получения устойчивых растений. Сельскохозяйственная биология, № 4, 96-100.

Соловьева А.И., Долгих Ю.И., Высоцкая О.Н., Попов А.С. (2011) Спектры ISSR- и REMAP-маркеров ДНК каллусов яровой пшеницы после этапов криосохранения по методу дегидратации. Физиология растений, 58, 359-366.

Староверов В.В., Степанова А.Ю., Терешонок Д.В., Литвинова И.И. (2011) Клеточная селекция в культуре in vitro льна многолетнего (Linum perenne L.) на устойчивость к окислительному стрессу. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России, Высоцкий В.А. и Алексеенко Л.В. (ред.), т. XXVI, М: ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии, с. 230-236.

Степанова А.Ю., Ильина В.С., Староверов В.В., Терешонок Д.В. (2011) Микроклональное размножение лилии азиатской. В сб.: Плодоводство и ягодоводство России, Высоцкий В.А. и Алексеенко Л.В. (ред.), т. XXVI, М: ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии, с. 237-243.

Терешонок Д.В., Степанова А.Ю., Долгих Ю.И., Осипова Е.С., Беляев Д.В., Кудоярова Г.Р., Высоцкая Л.Б., Вартапетян Б.Б. (2011) Влияние экспрессии ipt-гена на устойчивость растений пшеницы к корневому затоплению. Физиология растений, 58, 681-690.

Титова М.В., Решетняк О.В., Осипова Е.А., Осипьянц А.И., Шумило Н.А., Орешников А.В., Носов А.М.. (2011) Выращивание суспензионной культуры клеток Stephania glabra (Roxb.) Miers в различных системах: особенности роста и накопления алкалоида стефарина. Биотехнология,, 4, 40-46.

Tereshonok D.V., Stepanova A.Yu., Dolgikh Y.I., Osipova E.S., Belyaev D.V., Vartapetian B.B. (2010) Tolerance to root flooding of wheat plants (Triticum aestivum L.) produced with biotechnological approaches. Plant Stress, 4, 71-82.

Аль-Холани Х.А.М., Тоайма В.И.М, Долгих Ю.И. (2010) Получение растений кукурузы с повышенной устойчивостью к засухе путем клеточной селекции на среде с маннитом. Биотехнология, 1, 60-67.

Гладков Е.А. (2010) Биоэкология. Основы бионанотехнологий растений и микроорганизмов. Методическое пособие. М: МГТУ им. Н. Баумана, 28 с.

Гладков Е.А. (2010) Клеточная селекция растений, обладающих устойчивостью к тяжелым металлам и засолению. Биотехнология, 6, 56-59.

Гладков Е.А. (2010) Оценка фитотоксичности комплексного воздействия тяжелых металлов и определение ориентировочно допустимых концентраций для цинка и меди. Сельскохозяйственная биология, 6, 33-36.

Гладков Е.А., Глушецкая Л.С., Гладкова О.Н. (2010) Оценка устойчивости к тяжелым металлам полевицы побегоносной (Agrostis stolonifera), полученной в результате клеточной селекции, во втором поколении и ее способности к аккумуляции этих веществ. Биотехнология, 5, 76-80.

Долгих Ю.И. Степанова А.Ю., Осипова Е.С., Ташпулатов А.Ш.,. Хосп Дж., Рибариц А., Эберле-Борс Э., Тураев А.М. (2010) Влияние активирующегося при эмбриогенезе гена NtDCN1 на органогенез в культуре тканей табака. Физиология растений, 57, 125-131.

Иванова М.И., Каранова С.Л., Лудилов В.А. (2010) Мутационная селекция сельдерея корнеплодного. В сб.: Современные аспекты структурно-функциональной биологии растений и грибов, Пузина Т.И. (ред.), Орел, с. 145-150.

Мохаммед С.Е., Каранова С.Л., Долгих Ю.И. (2010) Получение толерантных к ионам кадмия клеточных линий и растений пшеницы методом клеточной селекции. В сб.:Современные аспекты структурно-функциональной биологии растений и грибов, Пузина Т.И. (ред.), Орел, с. 155-159.

Савенкова А.И., Базанова М.С., Терешонок Д.В., Степанова А.Ю. (2010) Использование культивируемых in vitro клеток сахарного тростника Saccharum officinarum L. как модели для изучения окислительного стресса в постанаэробный период. В сб.: Современные аспекты структурно-функциональной биологии растений и грибов, Пузина Т.И. (ред.), Орел, с. 155-159.

Соловьева А.И, Высоцкая О.Н., Попов А.С., Долгих Ю.И. (2010) Замораживание в жидком азоте дегидратированных каллусов яровой пшеницы (Triticum aestivum L.) и их морфогенетическая способность. Известия РАН, Серия биологическая, 5, 574-580.

Соловьева А.И., Высоцкая О.Н. (2010) Способ криосохранения каллусов яровой пшеницы (Triticum aestivum L.), полученных из двух типов эксплантов. В сб.: Биотехнология как инструмент сохранения биоразнообразия растительного мира, Волгоград: Из-во AVATARS, с. 110-113.

Степанова А.Ю., Долгих Ю.И., Вартапетян Б.Б. (2010) Получение растений пшеницы (Triticum aestivum L.), устойчивых к корневому затоплению. Биотехнология, 3, 64-69.

Гладков Е.А. (2009) Биотехнологический способ получения растений, обладающих устойчивостью к тяжелым металлам и засолению. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с. 33-36.

Гладков Е.А. (2009) Использование растений,полученных с помощью биотехнологических методов, для фиторемедиации почв мегаполисов. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с. 38-41.

Гладков Е.А. (2009) Клеточная селекция растений, обладающих устойчивостью к тяжелым металлам и засолению. Сельскохозяйственная биология, 6, 46-50.

Гладков Е.А. (2009) Оценка фитотоксичности тяжелых металлов на клеточном уровне и для целых растений. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с. 26-30.

Глушецкая Л.С., Гладков Е.А., Гладкова О.Н. (2009) Получение растений, обладающих толерантностью к цинку с помощью клеточной селекции. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с. 41-44.

Данилова С.А., Кузнецов В.В., Долгих Ю.И. (2009) Новый эффективный метод генетической трансформации кукурузы с использованием агробактериального монослоя. Физиология растений, 56, 454-460.

Загоскина Н.В., Назаренко Л.В., Долгих Ю.И., Ралдугина Г.Н. (2009) Введение в биотехнологию растений (учебное пособие). М.: ГОУ ВПО МГПУ, 148 с.

Иванова М.И., Каранова С.Л., Лудилов В.А. (2009) Индуцированный мутагенез и селекция практически ценных морфотипов сельдерея корнеплодного. В сб.: Мат. VIII Межд. симп. “Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования”. М.: РУДН, т.I, 3 с. 287-289.

Мохаммед С., Соловьева А.И., Долгих Ю.И. (2009) Оценка биотехнологического потенциала различных сортов пшеницы. Вестник РУДН, сер. Агрономия и животноводство, 4, 21-26.

Терешонок Д.В., Степанова А.Ю. (2009) Устойчивость контрольных и трансгенных растений к действию корневого затопления. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с. 35-41.

Терешонок Д.В., Степанова А.Ю. (2009) Изучение морфогенетического потенциала каллусных линий, полученных от трансгенных растений пшеницы с геном ipt. В сб.: Научные труды МГУИЭ, Гданский Н.И. (ред.), М.: МГУИЭ, с.42-46.

Избранные публикации лаборатории предыдущих лет

Степанова А.Ю., Терешонок Д.В., Осипова Е.С., Гладков Е.А., Долгих Ю.И. (2006) Получение трансгенных растений (Triticum aestivum L.) методом агробактериальной трасформации. Биотехнология, 3, 56-61.

Данилова С.А., Долгих Ю.И. (2005) Условия, необходимые для эффективной агробактериальной (A. Tumefaciens) трансформации эмбриогенного каллуса кукурузы. Физиология растений, 52, 600-607.

Данилова С.А., Долгих Ю.И. (2004) Стимуляция регенерации растений в культуре тканей кукурузы под действием антибиотика цефотаксима. Физиология растений, 51, 621-625.

Dolgikh Yu.I., Pustovoitova T.N., Zhdanova N.E. (2003) Hormonal regulation of somatic embryogenesis of maize. In: Phytohormones in Plant Biotechnology and Agriculture, Proc. NATO-Russia Int. Workshop, Kluwer Academic Publishers, p. 243-247.

Осипова Е.С., Ковеза О.В., Долгих Ю.И., Троицкий А.В., Шамина З.Б., Гостимский С.А. (2003) Выявление специфических RAPD- и ISSR-фрагментов у сомаклонов кукурузы и создание на их основе SCAR-маркеров. Генетика, 39, 1664-1672.

Vartapetian B.B., Stepanova A.Yu., Dolgikh Yu.I., Generozova I.P., Polyakova L.I. (2003) Functional electron microscopy in studies of plant response and adaptation to anaerobic stress. Ann. Bot., 91, 155-172.

Осипова Е.С., Кокаева З.Г., Троицкий А.В., Долгих Ю.И., Шамина З.Б., Гостимский С.А. (2001) RAPD-анализ сомаклонов кукурузы. Генетика, 37, 91-96.

Патенты

Литвинова И.И., Гладков Е.А., Гладкова О.Н. (2014) Способ введения в культуру клеток льна многолетнего. Патент РФ № 2506741 от 25.10.2013. Опубл. 20.02.2014. Бюл.№ 5.

Юрьева Н.О., Егоров Ц.А., Беляев Д.В., Соболькова Г.И., Деревягина М.К., Рогожин Е.А., Терешонок Д.В., Мелешин А.А., Шелухин П.Г. (2014) Способ получения форм картофеля in vitro, устойчивых к возбудителям фитофтороза и альтернариоза. Патент РФ № 2524424 от 14.06.2014. Опубликовано: 27.07.2014. Бюл. № 21.

Осипова Е.А., Носов А.М., Решетняк О.В., Титова М.В., Шумило Н.А. (2012) Штамм культивируемых клеток растения стефания гладкая ИФРSg26127 (Stephania glabra (Roxb.) Miers в условиях in vitro – продуцент стефарина. Патент РФ. Опубликовано 20.06.2012. Бюл. № 17.

Гладков Е.А., Глушецкая Л.С., Гладкова О.Н. (2008) Способ получения толерантных к ионам цинка однодольных растений in vitro. Патент РФ № 2260936, Б.И. № 27, с. 14.

Степанова А.Ю., Терешонок Д.В., Гладков Е.А., Осипова Е.С., Долгих Ю.И. (2007) Способ получения трансгенных однодольных растений in vitro. Патент РФ № 2301519, Б.И., № 18, с. 12.

Каранова С.Л. (2006) Способ отбора клеток растения диоскореи дельтовидной (Dioscorea deltoidea Wall) in vitro с повышенным содержанием стероидов. Патент РФ № 2288575, Б.И., № 31, с. 31.


Гранты

Грант РФФИ «Характер генетической изменчивости культивируемых in vitro клеток растений под действием стрессовых факторов» (№ 13-04-00950), под руководством Ю.И. Долгих

Молодежный грант РФФИ «Эффект криосохранения и природных стрессовых факторов на генетическую стабильность растений» (№14-04-31615), под руководством н.с. А.И. Соловьевой


наверх

127276, МОСКВА, УЛ. БОТАНИЧЕСКАЯ, 35. ТЕЛ.: (499) 678-54-00; ФАКС: (499) 678-54-20;
E-MAIL: IFR@IPPRAS.RU; WEBMASTER: IPPRAS.WEB@GMAIL.COM